В работе приводятся данные о встречаемости микроядер и ядерных аномалий в эритроцитах периферической крови у трёх видов карповых рыб (пескарь Gobio gobio (Linnaeus, 1759), гольян речной Phoxinus phoxinus (Linnaeus, 1758) и верховка Leucaspius delineatus (Heckel, 1843)), обитающих в реках с естественным (р. Берёзовка) и изменённым термическим режимом (р. Тёплая). В ходе исследования в эритроцитах рыб, населяющих как реку Тёплая, так и реку Берёзовка, обнаружен обширный перечень ядерных аномалий (20 и 22 типа соответственно). Диапазон средних значений встречаемости аномальных ядер в эритроцитах трёх исследованных видов рыб из реки Тёплая в среднем составил от 1,52±0,25 до 2,61±0,91 %, у рыб из реки Берёзовка – от 2,27±0,63 до 3,53±0,97 %. Оценка значимости различий между встречаемостью аномалий показала отсутствие статистически значимых различий между особями каждого из исследованных видов рыб из двух исследованных водотоков. Значения критерия Манна-Уитни (U) для выборок пескаря составили 74,0 (при p=0,45), для речного гольяна – 39,0 (при p=0,43), для верховки – 29,0 (при p=0,96). Несмотря на отсутствие достоверных различий, между выборками по общей встречаемости аномалий эритроцитов в выборках наблюдались различия по встречаемости отдельных типов аномалий. На основании полученных данных выдвинуто предположение о том, что на интенсивность возникновения аномалий в ядрах эритроцитов карповых рыб, обитающих в реке Тёплая, в большей степени оказывали воздействие гидрохимические факторы, нежели изменённый термический режим.
карповые рыбы, кровь, микроядра, аномалии эритроцитов, термическое загрязнение, река Тёплая, река Берёзовка
1. Голованов В. К. Температурные критерии жизнедеятельности пресноводных рыб. – М.: ПОЛИГРАФ-ПЛЮС, 2013. – 300 с
2. Голованов В. К., Капшай Д. С. Сравнительный анализ температурного оптимума и верхней температурной границы жизнедеятельности у молоди рыб, обитающих в водоемах Верхней Волги
3. Голованов В. К., Заботкина Е. А., Некрутов Н. С., Грачёва Е. Л. Влияние высокой температуры на показатели крови у молоди серебряного карася Carassius auratus и головешки-ротана Perccottus
4. Государственный доклад «О состоянии и охране окружающей среды в Красноярском крае в 2023 году». – Красноярск, 2024. – 358 с.
5. Есин Т. А., Нуриахметов А. А. Фоновый уровень ядерных аномалий в эритроцитах рыбы Danio rerio // Известия Российской Военно-медицинской академии. – 2018. – Т. 37, № 1. – С. 214–217.
6. Житенева Л. Д., Макаров Э. В., Рудницкая О. А. Основы ихтиогематологии (в сравнительном аспекте). –Ростов-на-Дону: Эверест, 2004. – 311 с.
7. Изюмов Ю. Г., Таликина М. Г., Чеботарёва Ю. В. Количество микроядер в эритроцитах периферической крови плотвы Rutilus rutilus (L.) и леща Abramis brama (L.) Рыбинского и Горьковского водохранилищ
8. Ильинских Н. Н., Ксенц А. С., Ильинских Е.Н, Васильев С. А., Манских В. Н., Ильинских И. Н. Микроядерный анализ в оценке цитогенетической нестабильности. – Томск: Изд-во ТГПУ, 2011.– 234 с.
9. Кислицина Н. И. Структура зообентоса приустьевых районов рек Берёзовка и Есауловка (Красноярский край). – Красноярск: Сибирский федеральный университет, 2019. – 64 с.
10. Крюков В. И. Индукция микроядер в эритроцитах карпа при сочетанном действии ионов меди и низкочастотного переменного электромагнитного поля // Биология в сельском хозяйстве. – 2018.
11. Крюков В. И. Анализ микроядер и ядерных аномалий в эритроцитах рыб, амфибий, рептилий и птиц: критерии выявления и типирования.– Красноярск: Научно-инновационный центр, 2023. – 94 с.
12. Крюков В. И. Влияние ионов кадмия на индукцию ядерных аномалий в эритроцитах карпов // Биология в сельском хозяйстве. – 2019. – Т. 22, № 1. – С. 11–17.
13. Крюков В. И., Лактюшина Н. В., Беляева А. О. Индукция микроядер в эритроцитах рыб водными вытяжками из ванадийсодержащих промотходов, захороненных на территории орловской городской свалки
14. Кухарева Т. А., Кладченко Е. С. Влияние факторов водной среды и физиологических состояний организма на количество аномальных эритроцитов у донных рыб Черного моря // Комплексные
15. Минеев А. К. Гематопатологии у рыб Куйбышевского водохранилища // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2016. – Т. 18, № 5–1. – С. 51–59.
16. Минеев А. К., Минеева О. В. Гематологические параметры и паразитофауна обыкновенного пескаря Gobio gobio (Linnaeus, 1758) // Вестник Томского государственного университета. Биология. – 2019. –
17. Минеев А. К. Патологии эритроцитов у рыб р. Большой Черемшан // Экологический сборник 7: Труды молодых ученых. Всероссийская (с международным участием) молодежная научная
18. Никонорова Д. В., Лукашина Л. С. Оценка экологического состояния реки Березовка (Красноярский край) по гидробиологическим показателям // Сборник материалов V Всероссийской
19. Правдин И. Ф. Руководство по изучению рыб (преимущественно пресноводных). – М.: Пищевая промышленность, 1966. – 376 с.
20. Шеина Т. А., Михеев П. Б., Мухина М. В., Костицына Н. В., Бакланов М. А. Влияние засоления и повышенной температуры воды на характеристики крови рыб в условиях бореальных водоемов: результаты
21. Шихмарев М. В. Влияние изменения температурного режима водоёма на жизнедеятельность водных экосистем // Актуальные научно-технические и экологические проблемы сохранения среды
22. Ayllon F., Garcia-Vazquez E. Induction of micronuclei and other nuclear abnormalities in European minnow Phoxinus phoxinus and mollie Poecilia latipinna: an assessment of the fish micronucleus test
23. Hassan A. M., El Nahas A. F., Mahmoud S., Barakat M. E., Ammar A. Y. Thermal stress of ambient temperature modulate expression of stress and immune-related genes and DNA fragmentation in Nile tilapia (
24. Arellano-Garcнa M. E., Torres-Bugarнn O., Garcнa-Garcнa M. R., Garcнa-Flores D., Toledano-Magaсa Y., Sanabria-Mora C. S., Garcнa-Ramos J. C. Genomic instability and cyto-genotoxic damage in animal
25. Hayashi M. The micronucleus test – most widely used in vivo genotoxicity test. Review // Genes and Environment. – 2016. – Vol. 38. – 6 p.
26. Raptis C. E., van Vliet M. T. H., Pfister S. Global thermal pollution of rivers from thermoelectric power plants // Environmental Research Letters. – 2016. – Vol. 11, N 10. – P. 104011.
27. Sylvester J. R. Critical thermal maxima of three species of Hawaiian estuarine fish: a comparative study // Journal of Fish Biology. – 1975. – Vol. 7, N 2. – P. 257–262.
28. Tang D., Chen M., Huang X., Zhang G., Zeng L., Zhang G., Wu S., Wang Y. SRplot: A free online platform for data visualization and graphing. PLoS One. 2023. – 18 (11). – e0294236.
29. Verones F., Hanafiah M. M., Pfister S., Huijbregts M. A., Pelletier G. J., Koehler A. Characterization factors for thermal pollution in freshwater aquatic environments // Environmental Science & Technology. – 2010.
