КОРРЕКЦИЯ АРГИНИНОМ, УМЕРЕННОЙ ФИЗИЧЕСКОЙ НАГРУЗКОЙ И ИХ КОМБИНАЦИЕЙ НАРУШЕНИЙ СОКРАТИТЕЛЬНОЙ ФУНКЦИИ СКЕЛЕТНОЙ МЫШЦЫ ПРИ СТЕРОИДНОЙ МИОПАТИИ В ЭКСПЕРИМЕНТАХ НА КРЫСАХ
Аннотация и ключевые слова
Аннотация (русский):
В экспериментах на крысах изучали эффективность аргинина (АРГ, 100 мг/кг/сутки), умеренной динамической физической нагрузки (ФН) и их комбинации в компенсации расстройств сократительной функции m. tibialis anterior, вызванных введением дексаметазона (ДМ, 0,25 мг/кг/1 раз в 2-е суток, в течение 10–60 дней). Установлено, что АРГ, ФН и их комбинация, используемые в комплексе с ДМ, предотвратили характерное для ДМ-групп ухудшение резистентности мышцы к утомлению, но неоднозначно сказывались на сократительных и эргометрических ее параметрах: АРГ полностью компенсировал их ухудшение, вызванное ДМ; спустя первые 10 дней применения ДМ с ФН наблюдалось ухудшение амплитудных и временных параметров сокращения мышцы, тогда как по завершении 2-месячного периода – их нормализация. АРГ, применяемый в комплексе с ФН и ДМ, предотвратил типичное для ДМ+ФН-групп ухудшение амплитудных, но не временных параметров сокращения СМ.

Ключевые слова:
скелетная мышца, дексаметазон, стероидная миопатия, аргинин, физическая нагрузка, крысы
Список литературы

1. Chang J. S., Kong I. D., Irisin prevents dexamethasone-induced atrophy in C2C12 myotubes, Pflugers Arch., 472, 495 (2020). DOI: https://doi.org/10.1007/s00424-020-02367-4 EDN: https://elibrary.ru/WHTRMS

2. Park S. H., Oh J., Jo M., Kim J. K., Kim D. S., Kim H. G., Yoon K., Yang Y., Geum J. H., Kim J. E., Choi S. Y., Kim J. H., Cho J. Y., Water Extract of Lotus Leaf Alleviates Dexamethasone-Induced Muscle

3. Adhikary S., Choudhary D., Tripathi A. K., Karvande A., Ahmad N., Kothari P., Trivedi R., FGF-2 targets sclerostin in bone and myostatin in skeletal muscle to mitigate the deleterious effects

4. Kim H., Jang M., Park R., Jo D., Choi I., Choe J., Oh W. K., Park J., Conessine Treatment Reduces Dexamethasone-Induced Muscle Atrophy by Regulating MuRF1 and Atrogin-1 Expression, J. Microbiol.

5. Archer-Lahlou E., Lan C., Jagoe R. T., Physiological culture conditions alter myotube morphology and responses to atrophy treatments: implications for in vitro research on muscle wasting, Physiol. Rep., 6, e13726

6. Grishin S. N., Gabdrakhmanov A. I., Khairullin A. E., Ziganshin A. U., The Influence of Glucocorticoids and Catecholamines on the Neuromuscular Transmission, Biologicheskie membrany (Biological

7. Kamaliev R. R., Grishin S. N., Falou Zh. Yu., Ziganshin A. U., The effect of hydrocortisone, ATP and adenosine on rat skeletal muscle contraction, Kazanskiy meditsinskiy zhurnal (Kazan Medical Journal), 90, 556

8. Langendorf E. K., Rommens P. M., Drees P., Mattyasovszky S. G., Ritz U., Detecting the Effects of the Glucocorticoid Dexamethasone on Primary Human Skeletal Muscle Cells-Differences to the Murine Cell Line,

9. Macedo A. G., Krug A. L., Souza L. M., Martuscelli A. M., Constantino P. B., Zago A. S., Rush J. W. E., Santos C. F., Amaral S. L., Time-course changes of catabolic proteins following muscle atrophy

10. Cai X., Yuan Y., Liao Z., Xing K., Zhu C., Xu Y., Yu L., Wang L., Wang S., Zhu X., Gao P., Zhang Y., Jiang Q., Xu P., Shu G., α-Ketoglutarate prevents skeletal muscle protein degradation and muscle

11. Lomonosova Yu. N., Shenkman B. S., Nemirovskaya T. L., Signal effects of substrate stimulation of nNOS in rat skeletal muscle after eccentric exercise, Doklady akademii nauk (Reports of the Academy of

12. Safdar A., Little J. P., Stokl A. J., Hettinga B. P., Akhtar M., Tarnopolsky M. A., Exercise Increases Mitochondrial PGC-1a Content and Promotes Nuclear-Mitochondrial Crosstalk to Coordinate Mitochondrial

13. Vladimirsky V. E., Vladimirsky E. V., Lunina A. N., Fesyun A. D., Rachin A. P., Lebedeva O. D., Yakovle M. YU., Tubekova (Ansokova) M. A., Molecular mechanisms of adaptive and therapeutic

14. Boger R. H., Bode-Boger S. M., The clinical pharmacology of L-arginine, Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol., 41, 79 (2001). DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.pharmtox.41.1.79

15. Cabrales P., Tsai A. G., Intaglietta M., Exogenous nitric oxide induces protection during hemorrhagic shock, Resuscitation, 80, 707 (2009). DOI: https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2009.03.001

16. Gorini G., Gamberi T., Fiaschi T., Mannelli M., Modesti A., Magherini F., Irreversible plasma and muscle protein oxidation and physical exercise, Free Radic. Res., 53, 126 (2019). DOI: https://doi.org/10.1080/10715762.2018.1542141; EDN: https://elibrary.ru/RJVXRJ

17. Sagidova S. A., Influence physical activities on near-limit of free radical oxidation and reactivity microvascular in myocardium, Nauka i sport: sovremennye tendencii (Science and sport: current

18. Geng H., Song Q., Cheng Y., Li H., Yang R., Liu S., Hao L., MicroRNA 322 Aggravates Dexamethasone-Induced Muscle Atrophy by Targeting IGF1R and INSR, Int. J. Mol. Sci., 21, 1111

19. Gunina L., The mechanisms of effects of antioxidants on the physical performance of athletes, Nauka v olimpijskom sporte (Science in Olympic sports), 1, 25 (2016).

20. Park M. Y., Jeong Y. J., Kang G. C., Kim M.-H., Kim S. H., Chung H.-J., Jung J. Y., Kim W. J., Nitric oxide-induced apoptosis of human dental pulp cells is mediated by the mitochondria-dependent pathway, Korean

21. Katzung B.G. Greenspan's Basic and Clinical Pharmacology. B.G. Katzung (ed.). 14th ed. New York: McGraw-Hill Medical; 2018.

22. Shekunova E. V., Kovaleva M. A., Makarova M. N., Makarov V. G., Dose selection in preclinical studies: cross-species dose conversion, Vedomosti Nauchnogo tsentra ekspertizy sredstv meditsinskogo

23. Bger R. H., The Pharmacodynamics of L-Arginine, J. Nutr., 137, 1650 (2007). DOI: https://doi.org/10.1093/jn/137.6.1650s

24. Wu G., Morris S. M. Jr., Arginine metabolism: nitric oxide and beyond, Biochem. J., 336, 1 (1998). DOI: https://doi.org/10.1042/bj3360001

25. Karimova R. G., Bilalov I. N., Garipov T. V., Activization of nitric oxide formation in the rats organism by different factors, Fundamental'nyye issledovaniya (Basic Research), 2, 53 (2015). (In Russ.)

26. Zhelnin Y. V., Zvyagintseva T. V, Kryvoshapka O. V., ost-traumatic regeneration of the alveolar bone and its relation to the nitric oxide metabolites in rats with glucocorticoid osteoporosis, Uspekhi

27. Dreval A. V., Komeredus I. V., Budul N. A., Britvin T. A., Terpigorev S. A., Kabanova T. G., Chekanova A. V., Manifestations of hypercorticism in patients on the background of a short course of systemic

28. Elin R. J., Magnesium metabolism in health and disease, Disease-a-Month, 34, 166 (1988). DOI: https://doi.org/10.1016/0011-5029(88)90013-2

29. Nishida H., Ikegami A., Kaneko C., Kakuma H., Nishi H., Tanaka N., Aoyama M., Usami M., Okimura Y., Dexamethasone and BCAA Failed to Modulate Muscle Mass and mTOR Signaling in GH-Deficient Rats,

30. Korkushko O. V., Duzhak H. V., Shatylo V. B., Bondarenko Ye. V., Nedbailo A. V., Study of Kardioarginin – Zdorovia Effect on Motor Function of Vascular Endothelium in Patients with Hypertension

31. Danese E., Lippi G., Sanchis-Gomar F., Brocco G., Rizzo M., Banach M., Montagnana M., Physical Exercise and DNA Injury: Good or Evil? Adv. Clin. Chem., 81, 193 (2017).

32. Voltarelli F. F., Gobatto C. A., de Mello M. A. R., Minimun blood lactate and muscle protein of rats during swimming exercise, Biol. Sport., 25, 23 (2008).

33. Trush V. V., Sobolev V. I., Efficiency of alphacalcidol in compensation of disorders of contractile functions of the skeletal muscle with dexamethazone hypercorticism in experiments on rats, Uchenyye

34. Trush V. V., Sobolev V. I., Influence of long dexamethasone administration on electrophysiological parameters of the rat skeletal muscle at rest and exhaustion development, Eksperimental'naya i

35. Trush V. V., Sobolev V. I., Alphaalcidol modulation of the dexamethazone effects on parameters of M-response of skeletal muscle of white rats, Pathological Physiology and Experimental Therapy, 65, 53

36. Uchikawa K., Takahashi H., Hase K., Masakado Y., Liu M., Strenuous exercise-induced alterations of muscle fiber cross-sectional area and fiber-type distribution in steroid myopathy rats, Am. J. Phys. Med.

Войти или Создать
* Забыли пароль?