Симферополь, Республика Крым, Россия
Сахарный диабет является глобальной медико-социальной проблемой, требующей разработки новых подходов к изучению его патогенеза и лечения. Данное исследование посвящено анализу особенностей биохимических сдвигов у крыс линии Wistar (n=28) при аллоксановом диабете через два месяца после его индукции (внутрибрюшинно трижды по 100 мг/кг через сутки в суммарной дозе 300 мг/кг). Изменения биохимических показателей сыворотки крови крыс свидетельствуют о существенном нарушении углеводного, жирового, белкового и энергетического обменов и развитии воспалительного процесса, что может быть следствием нарушения функций и структуры не только поджелудочной железы, но и почек, печени, кровеносных сосудов и других органов. Установлены признаки органного поражения, включая деструктивные изменения в мышечной ткани, нарушение функций печени и ранние проявления диабетической нефропатии.
сахарный диабет; аллоксан-индуцированный диабет; биохимические показатели крови крыс; углеводный, жировой, белковый, энергетический обмены.
1. Sun H. IDF diabetes atlas: global, regional and country-level diabetes prevalence estimates for 2021 and projections for 2045 / H. Sun, P. Saeedi, S. Karuranga [et al.] // Diabetes Res. Clin. Pract. – 2022. – Vol. 183.
2. Stanifer J. W. Prevalence, risk factors, and complications of diabetes in the Kilimanjaro region: a population-based study from Tanzania /J. W. Stanifer, C. R. Cleland, G. J. Makuka [et al.]//PLoS One.– 2016.
3. Дедов И. И. Сахарный диабет в Российской Федерации: распространенность, заболеваемость, смертность, параметры углеводного обмена и структура сахароснижающей терапии по данным
4. Jwad M. Types of diabetes and their effect on the immune system / M. Jwad, H. Yousif Al-Fatlawi, P. D. Student // J. Adv. Pharm. Pract. – 2022. – Vol. 4, No. 1. – P. 21–30.
5. Lenzen S. The mechanisms of alloxan- and streptozotocin-induced diabetes / S. Lenzen // Diabetologia. – 2008. – Vol. 51. – P. 216–226.
6. Пальчикова Н. А. Гормонально-биохимические особенности аллоксановой и стрептозотоциновой моделей экспериментального диабета / Н. А. Пальчикова, Н. В. Кузнецова, О. И. Кузьминова
7. Zakaria Z. Z. Animal models in type 2 diabetes mellitus research: pros and cons / Z. Z. Zakaria, M. N. Ahmad, N. A. Qinna // Jordan J. Agric. Sci. – 2021. – Vol. 17. – P. 425–440.
8. Gati M. A. Physiological and histological study of experimental diabetes mellitus by alloxan / M. A. Gati // Int. J. Adv. Res. – 2016. – Vol. 4, No. 3. – P. 1814–1818.
9. Бафаев Ж. Т. Особенности типологических свойств животных в клиническом течении экспериментальной модели аллоксанового диабета / Ж. Т. Бафаев, А. А. Мавланов, З. Н. Хамидова
10. Rashmi P. Rodent models for diabetes / P. Rashmi, A. Urmila, A. Likhit [et al.] // 3 Biotech. – 2023. – Vol. 13. – P. 80. – DOI:https://doi.org/10.1007/s13205-023-03488-0.
11. Elsner M. Importance of the GLUT2 glucose transporter for pancreatic beta cell toxicity of alloxan / M. Elsner, M. Tiedge, B. Guldbakke [et al.] // Diabetologia. – 2002. – Vol. 45, No. 11. – P. 1542–1549.
12. Radenković M. Experimental diabetes induced by alloxan and streptozotocin: the current state of the art / M. Radenković, M. Stojanović, M.Prostran // J. Pharmacol. Toxicol. Methods.–2016.–Vol. 78.– P.13–31.
13. Чуян Е. Н. Особенности изменения биохимических показателей крови крыс в условиях разных экспериментальных моделей аллоксан-индуцированного диабета/Е. Н. Чуян, С. Ю. Ливенцов, Н. И.
14. Данилова И. Г. Способ моделирования аллоксанового диабета / И. Г. Данилова, И. Ф. Гетте: Патент на изобретение № 2534411; заявл. 27.11.2014; опубл. 27.11.2014. – Бюл. № 33.
15. Care D. American Diabetes Association. 2. Classification and Diagnosis of Diabetes: Standards of Medical Care in Diabetes–2019 // Diabetes Care. – 2019. – Vol. 42, Suppl. 1. – P. S13–S28.
16. Дедов И. И. Алгоритмы специализированной медицинской помощи больным сахарным диабетом / Под ред. И. И. Дедова, М. В. Шестаковой, А. Ю. Майорова. – 9-й вып. // Сахарный диабет
17. Barcham D. An improved color reagent for the determination of blood glucose by the oxidase systeme / D. Barcham, P. Trinder // Analyst. – 1972. – Vol. 97, No. 151. – P. 142–145.
18. Little R. R. Standardization of HbA1c Measurement / R. R. Little, C. L. Rohlfing, D. B. Sacks // Clin. Chem. – 2007. – Vol. 53, No. 6. – P. 810–817. – DOI:https://doi.org/10.1373/clinchem.2007.091967.
19. Sacks D. B. Insulin assays and reference values / D. B. Sacks // Diabetes Metab. – 2007. – Vol. 33, No. 5. – P. 459–464. – DOI:https://doi.org/10.1016/S1262-3636(07)80059-5.
20. Allain C. Enzymatic determination of total serum cholesterol / C. Allain, L. Poon, G. Chan [et al.] // Clin. Chem. – 1974. – Vol. 20, No. 4. – P. 470–475.
21. Roeschlau P. Enzymatische Bestimmung des Gesampt-Cholesterins in Serum / P. Roeschlau, E. Bernt, W. A. Gruber // Clin. Chem. Clin. Biochem. – 1974. – Vol. 12, No. 5. – P. 226–227.
22. Nauk M. Measurement of high-density-lipoprotein cholesterol / M. Nauk, D. Wiebe, G. Warnick // Handbook of Lipoprotein Testing. – 2nd ed. – Washington DC: AACC Press, 2001. – P. 221–244.
23. Cornall A. G. Determination of serum proteins by means of the biuret reaction / A. G. Cornall, C. J. Bardawill, M. M. David // J. Biol. Chem. – 1949. – Vol. 177, No. 2. – P. 751–766.
24. Burtis C. A. Tietz Textbook of Clinical Chemistry and Molecular Diagnostics / C. A. Burtis, E. R. Ashwood, D. E. Bruns. – 5th ed. – St. Louis: Elsevier, 2012.
25. Fossati P. Use of 3,5-dichloro-2-hydroxybenzenesulfonic acid/4-aminophenazone chromogenic system in direct enzymic assay of uric acid in serum and urine / P. Fossati, L. Prencipe, G. Berti // Clin. Chem. – 1980.
26. Henry R. J. Revised spectrophotometric methods for the determination of glutamic-oxalacetic transaminase, glutamic-pyruvic transaminase, and lactic acid dehydrogenase / R. J. Henry, N. Chiamori,
27. Stein W. Creatine kinase (total activity), creatine kinase isoenzymes and variants / W. Stein // In: Clinical Laboratory Diagnostics: Use and Assessment of Clinical Laboratory Results. – Frankfurt: TH-
28. Долгов В. В. Клиническая лабораторная диагностика. Национальное руководство. Том 1 / В. В. Долгов, В. В. Меньшиков. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2013.
29. Moss D. W. Clinical enzymology / D. W. Moss, A. R. Henderson // In: Tietz Textbook of Clinical Chemistry. – 3rd ed. – Philadelphia: WB Saunders Company, 1999. – P. 617–721.
30. Fachbach F. Age-dependent reference limits of several enzymes in plasma at different measuring temperatures / F. Fachbach, B. Zawta // Klin. Lab. – 1992. – Vol. 38. – P. 555–561.
31. Guder W. G. The quality of diagnostic samples / W. G. Guder, B. Zawta [et al.]. – 1st ed. – Darmstadt: GIT Verlag, 2001. – P. 14–15.
32. Claus D. R. Radioimmunoassay of human C-reactive protein and levels in normal sera / D. R. Claus, A. P. Osmand, H. Gewurz // J. Lab. Clin. Med. – 1976. – Vol. 87. – P. 120–128.
33. Hind C. R. H. The role of serum C-reactive protein (CRP) measurement in clinical practice / C. R. H. Hind, M. B. Pepys // Int. Med. – 1984. – Vol. 5. – P. 112–151.
34. Ярмолинская М. И. Экспериментальные модели сахарного диабета 1-го типа/М. И. Ярмолинская, Н. Ю. Андреева, Е. И. Абашова, Е. В. Мишарина // Журнал акушерства и женских болезней. – 2019.
35. Эльбекьян К. С. Особенности протекания аллоксан-индуцированного сахарного диабета у экспериментальных крыс / К. С. Эльбекьян, А. Б. Ходжаян, Ф. А. Биджиева [и др.] // Медицинский
36. Биджиева Ф. А. Биохимические особенности аллоксан-индуцированного сахарного диабета / Ф. А. Биджиева // Медицинский алфавит. – 2018. – Т. 31, № 2. – С. 12–14.
37. Fajarwati I. Administration of alloxan and streptozotocin in Sprague Dawley rats and the challenges in producing diabetes model / I. Fajarwati, D. D. Solihin, T. Wresdiyati, I. Batubara // IOP Conf. Ser.: Earth
38. Maleki V. The effect of resveratrol on advanced glycation end products in diabetes mellitus: a systematic review / V. Maleki [et al.] // Arch. Physiol. Biochem. – 2020. – Vol. 126, No. 6. – P. 1–10.
39. Яшанова М. И. Валидность моделей экспериментального диабета для изучения окислительного стресса / М. И. Яшанова, Т. Г. Щербатюк, В. Ю. Николаев // Журн. медико-биологических
40. Джафарова Р. Э. Сравнительное исследование различных моделей аллоксан-индуцированного сахарного диабета / Р. Э. Джафарова // Казанский медицинский журнал. – 2013. – № 6.
41. Игнатчик Д. А. Влияние аллоксана и стрептозотоцина на уровень инсулина и систему глутатиона в тканях животных [Электронный ресурс] / Д. А. Игнатчик // Актуальные проблемы современной
42. Ломаева С. В. Особенности обмена биополимеров соединительной ткани в печени крыс с аллоксановым диабетом / С. В. Ломаева, И. Ф. Гетте, Т. С. Булавинцева [и др.] // Бюл. сиб.
43. Михайличенко В. Ю. Эффект трансплантации культуры клеток поджелудочной железы при аллоксановом сахарном диабете у крыс в эксперименте / В. Ю. Михайличенко, С. С. Столяров //
44. Данилова И. Г. Цитокиновая регуляция регенераторных процессов в поджелудочной железе при аллоксановом сахарном диабете у крыс и его коррекции соединением ряда 1,3,4-тиадиазина и
45. Kitabchi A. E. Thirty years of personal experience in hyperglycemic crises: diabetic ketoacidosis and hyperglycemic hyperosmolar state / A. E. Kitabchi, G. E. Umpierrez, J. N. Fisher, M. B. Murphy,
46. Harita N. Lower serum creatinine is a new risk factor of type 2 diabetes: the Kansai healthcare study / N. Harita, T. Hayashi, K. K. Sato [et al.] // Diabetes Care. – 2009. – Vol. 32. – P. 424–426.
47. Lorenzo C. Risk of type 2 diabetes among individuals with high and low glomerular filtration rates / C. Lorenzo, S. D. Nath, A. J. Hanley [et al.] // Diabetologia. – 2009. – Vol. 52. – P. 1290–1297.
48. Hjelmesжth J. Low serum creatinine is associated with type 2 diabetes in morbidly obese women and men: a cross-sectional study / J. Hjelmesжth, J. Rшislien, N. Nordstrand [et al.] // BMC Endocr. Disord. – 2010.
49. Мадянов И. В. Мочевая кислота и сахарный диабет. Промежуточные итоги многолетних исследований / И. В. Мадянов // Здравоохранение Чувашии. – 2017. – № 2. – С. 59–64.
50. Шестакова М. В. Сахарный диабет и хроническая болезнь почек: возможности прогнозирования, ранней диагностики и нефропротекции в XXI веке /М. В. Шестакова//Терапевт. архив.– 2016. – Т. 88, № 6.
51. Лебедева Н. О. Маркеры доклинической диагностики диабетической нефропатии у пациентов с сахарным диабетом 1 типа /Н. О. Лебедева, О. К. Викулова // Сахарный диабет. – 2012. – № 2. – С. 38–45.
52. Климонтов В. В. Хроническая болезнь почек при сахарном диабете / В. В. Климонтов, А. И. Корбут // Терапевт. архив. – 2020. – № 5. – С. 58–58.
53. Mistry J. Antidiabetic activity of mango peel extract and mangiferin in alloxan-induced diabetic rats / J. Mistry, M. Biswas, S. Sarkar [et al.] // Futur. J. Pharm. Sci. – 2023. – Vol. 9. – P. 22.
54. Kleiner D. E. Histology of nonalcoholic fatty liver disease and nonalcoholic steatohepatitis in adults and children / D. E. Kleiner, H. R. Makhlouf // Clin. Liver Dis. – 2016. – Vol. 20, No. 2. – P. 293–312.
55. Lankin V. Z. The initiation of the free radical peroxidation of low density lipoproteins by glucose and its metabolite methylglyoxal: a common molecular mechanism of vascular wall injury in atherosclerosis
56. Van L. S. High-density lipoprotein at the interface of type 2 diabetes mellitus and cardiovascular disorders / L. S. Van [et al.] // Curr. Pharm. Des. – 2010. – Vol. 16. – P. 1504–1516.
57. Андрейченко И. А. Информативность изменений биохимических параметров сыворотки крови при сахарном диабете 2-го типа / И. А. Андрейченко, С. Д. Галкин // Вестн. новых мед.
58. Kusmartseva I. Temporal analysis of amylase expression in control, autoantibody-positive, and type 1 diabetes pancreatic tissues / I. Kusmartseva, M. Beery, H. Hiller [et al.] // Diabetes. – 2020. – Vol. 69, No. 1.
59. Ross J. J. Exocrine pancreatic enzymes are a serological biomarker for type 1 diabetes staging and pancreas size / J. J. Ross, C. H. Wasserfall, R. Bacher [et al.] // Diabetes. – 2021. – Vol. 70, No. 4.
60. Endo T. Amylase α-2A autoantibodies: novel marker of autoimmune pancreatitis and fulminant type 1 diabetes / T. Endo, S. Takizawa, S. Tanaka [et al.] // Diabetes. – 2009. – Vol. 58, No. 3. – P. 732–737.
61. Eprintsev A. T. Expression levels and activity of rat liver lactate dehydrogenase isoenzymes in alloxan diabetes / A. T. Eprintsev, I. R. Bondareva, N. V. Selivanova // Biochem. (Moscow), Suppl. Series B:
62. Сатторова М. А. Эуфорбин-3 и Глабра на течение патологического процесса аллоксан-индуцированного сахарного диабета / М. А. Сатторова, М. А. Мустафакулов // Modern Educational
63. Мусатов О. В. Активность щелочной фосфатазы сыворотки крови в зависимости от вида операции при ранах печени, селезёнки и почки в эксперименте/О. В. Мусатов, С. А. Зурнаджан, А. В. Коханов
64. Бутолин Е. Г. Изменение содержания минеральных веществ в костной ткани у крыс с экспериментальным диабетом / Е. Г. Бутолин [и др.] // Вестн. Удмуртского ун-та. Сер. Биология. Науки о Земле.
65. Терентьева М. Г. Изменение активности гамма-глутамилтрансферазы в тканях печени у крольчат в разные фазы постнатального онтогенеза / М. Г. Терентьева, Н. В. Мардарьева, Н. В. Щипцова
66. Собирова Д. Р. Роль и взаимодействие креатинфосфокиназы и гамма-глутамилтранспептидазы в развитии сахарного диабета и их значение в патогенезе бронхолёгочных заболеваний/Д. Р. Собирова.
67. Vнtek L. The role of bilirubin in diabetes, metabolic syndrome, and cardiovascular diseases / L. Vнtek // Front. Pharmacol. – 2012. – Vol. 3. – P. 55.
68. Basiglio C. L. Complement activation and disease: protective effects of hyperbilirubinaemia / C. L. Basiglio, S. M. Arriaga, F. Pelusa [et al.] // Clin. Sci. – 2010. – Vol. 118. – P. 99–113.
69. Hwang H. J. Relationship between bilirubin and C-reactive protein / H. J. Hwang, S. W. Lee, S. H. Kim // Clin. Chem. Lab. Med. – 2011. – Vol. 49. – P. 1823–1828.
70. Richardson S. J. The prevalence of enteroviral capsid protein Vp1 immunostaining in pancreatic islets in human type 1 diabetes / S. J. Richardson, A. Willcox, A. J. Bone, A. K. Foulis, N. G. Morgan
71. Asmat U. Diabetes mellitus and oxidative stress – a concise review / U. Asmat, K. Abad, K. Ismail // Saudi Pharm. J. – 2016. – Vol. 24, No. 5. – P. 547–553.
72. Suryadinata R. V. Effectiveness of lime peel extract (Citrus aurantifolia Swingle) against C-reactive protein levels in alloxan-induced Wistar rats / R. V. Suryadinata, A. Lorensia, K. Sefania // Glob. Med.
73. Ferrer J. C. Control of glycogen deposition / J. C. Ferrer, C. Favre, R. R. Gomis, J. M. Fernбndez-Novell, M. Garcнa-Rocha, N. de la Iglesia [et al.] // FEBS Lett. – 2003. – Vol. 546, No. 1. – P. 127–132.
74. Jiang S. Hepatic functional and pathological changes of type 1 diabetic mice in growing and maturation time / S. Jiang, X. Tang, K. Wang, Y. Liang, Y. Qian, C. Lu [et al.] //J. Cell. Mol. Med. – 2019. – Vol. 23, No. 8.
75. Буеверов А. О. Поражение печени при сахарном диабете 1-го типа / А. О. Буеверов, А. В. Зилов // Рос. журн. гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. – 2021. – Т. 31, № 2. – С. 7–13.
